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小鼠单克隆抗体的制备过程
小鼠单克隆抗体制备的核心是通过杂交瘤技术将免疫小鼠的B细胞与骨髓瘤细胞融合,筛选出能稳定分泌特异性抗体的杂交瘤细胞。以下是关键步骤与要点:
1. 抗原免疫小鼠
抗原选择:需高纯度蛋白(>90%)或偶联载体的小分子抗原(如KLH偶联多肽)。
佐剂乳化:
初次免疫:抗原与弗氏wanquan佐剂(FCA)乳化(油包水状态)。
加强免疫:后续使用弗氏不wanquan佐剂(FIA)或直接注射抗原。
免疫方案:
皮下多点注射(如腋下、腹股沟),间隔2-4周加强免疫3-5次。
末次免疫后3-5天检测血清效价(ELISA效价≥1:10,000为合格)。
2. 细胞融合与杂交瘤筛选
脾细胞制备:处死免疫小鼠,无菌取脾,研磨成单细胞悬液。
融合条件:
脾细胞与骨髓瘤细胞(如SP2/0)按1:3比例混合,聚乙二醇(PEG)诱导融合。
HAT培养基筛选:
未融合的B细胞和骨髓瘤细胞因缺乏HGPRT酶而死亡,仅杂交瘤细胞存活。
3. 杂交瘤克隆化与抗体检测
有限稀释法:将杂交瘤细胞稀释至0.5-1个细胞/孔,培养后筛选单克隆。
抗体检测:
ELISA或Western Blot验证抗体特异性与效价。
阳性克隆扩增后,通过腹水法或体外培养大量生产抗体。
4. 抗体纯化与保存
粗提:硫酸铵沉淀法浓缩腹水或培养上清。
精细纯化:Protein A/G亲和层析或抗原偶联柱纯化。
保存条件:
短期:4℃加0.02%NaN₃(1-6个月)。
长期:-20℃或-80℃分装冻存。
关键注意事项
动物伦理:遵循实验动物福利规范,减少免疫与采血痛苦。
批次差异:多克隆抗体易受动物个体差异影响,需严格质控(如SDS-PAGE纯度检测)。
注:仅供科研使用,以上资料供参考,如需具体产品说明请咨询技术老师或品牌供应商。
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